Автор работы: Пользователь скрыл имя, 19 Сентября 2011 в 19:18, курсовая работа
В настоящее время 90% мировой продукции дрожжей получают из мелассы — отхода свеклосахарного производства. За рубежом ее перерабатывают в смеси с тростниковой патокой. Меласса является концентрированным раствором сахаров и различных минеральных и органических веществ. Меласса является в основном источником углерода для построения дрожжевой массы.
1. Сырьё и вспомогательные материалы для дрожжевого производства……………………………………………………………………………..…3
1.1. Свеклосахарная меласса — основное сырье для дрожжевого производства……………………………………………………………………………….3
1.2. Основные показатели состава мелассы, поступающей на дрожжевые заводы………………………………………………………………………………………4
1.3. Питательные соли и химикалии, применяемые в дрожжевом производстве……………………………………………………………………………….5
1.4. Производственная вода…………………………………………………………….....7
2. Технология хлебопекарных дрожжей………………………………………………....8
Схема получения хлебопекарных дрожжей………………………………….......…..8
Подготовка мелассы и приготовление………………………………………………..8
2.2.1 Гомогенизация……………………………………………………………………..8
2.2.2 Осветление………………………………………………………………………….8
2.2.3 Приготовление растворов питательных солей......……………………………...11
2.2.4 Подготовка кукурузного экстракта………………………………………...……12
Аэрация среды……………………………………………………………………...…12
Пенообразование и пеногашение……………………………………………………14
Технологическая схема выращивания дрожжей……………………………..…….14
Производство маточных дрожжей…………………………………………………..15
Стерилизация посуды и сред…………………………………………………….15
Выделение чистой культуры…………………………………………………….15
Укороченная схема выращивания маточных дрожжей………………………..16
Сепарирование маточных дрожжей……………………………………………..17
Хранение маточных дрожжей………………………………..………………….17
Производство товарных дрожжей…………………………………………….……..18
Генерация Б……………………………………………………………………….18
Генерация В……………………………………………………………………….19
Дозревание………………………………………………………………………...19
Сепарирование дрожжей……………………………………………………………..19
Схемы сепарирования……………………………………………………………20
Нарушения процесса сепарирования……………………..……………………..20
Товарное дрожжевое молоко………………………………………………...............20
Прессование дрожжей………………………………………………………...........21
Выделение дрожжей на фильтр-прессах………………………………………21
Выделение дрожжей на вакуум-фильтрах…………………………………….21
Фасовка дрожжей…………………………………………………………………...22
Хранение и транспортировка дрожжей……………………………………..…….23
Причины порчи дрожжей……………………….………………………………….23
Биологические факторы…………………………..……………………………23
Микробиологические факторы………………………………………………...24
Повышение стойкости дрожжей……………………………………………….….24
Получение сушеных дрожжей……………………………………………….…….24
Биохимические изменения дрожжевой клетки в процессе высушивания….25
Подготовка дрожжей к высушиванию………………………………………...26
Режимы сушки дрожжей……………………………………………………….26
3. Дрожжи, применяемые в дрожжевом производстве………………………………...28
Список литературы…………………………………………………………………………………
Представляет
интерес следующий вариант
Аналогичные
схемы обеззараживания и
В аварийных ситуациях, при невозможности пастеризовать и осветлять мелассу необходимо особенно тщательно обеззараживать ее любым из указанных выше антисептиков.
Мембранная фильтрация. Разделение жидких сред с помощью полупроницаемых мембран — ультрафильтрация — позволяет выделить вещества, размер молекул которых превышает 10 диаметров молекул растворителя, но не более 0,5 мкм. Эти низкомолекулярные фракции проникают сквозь мембрану при прокачивании над ее поверхностью жидкости, а высокомолекулярные фракции остаются в потоке.
Ультрафильтрационные
установки различных типов
2.2.3 Приготовление растворов питательных солей
Помещение для подготовки раствора питательных солей должно примыкать к складу химикатов и быть изолированным от основного производства.
Водная вытяжка суперфосфата. В чан с мешалкой и барботером заливают воду и при перемешивании небольшими порциями всыпают суперфосфат. Смесь подогревают открытым паром до 45...50 °С, после 5...6 ч перемешивания мешалку останавливают. Через 10...12 ч осветленный раствор декантируют и направляют в приточные чаны одновременно с мелассой либо в специальные сборники для дозирования непосредственно в дрожжерастильный аппарат.
Растворы сульфата аммония, диаммонийфосфата и сульфата магния. Готовят их раздельно из расчета на сутки или смену. Резервуары должны быть изготовлены из кислотоупорных материалов и снабжены мешалками.
Соли дозируют из расчета 100...200 кг на 1 м3 раствора, 30 мин перемешивают, 3...4 ч отстаивают для осаждения взвеси и декантируют в мерники для подачи в дрожжерастильный аппарат.
Раствор диаммонийфосфата готовят при рН 6,0...6,5. Подкисляют воду серной кислотой до засыпки диаммонийфосфата.
Раствор аммиачной воды. Разбавляют до получения концентрации азота, эквивалентной раствору сульфата аммония.
Растворы хлорида калия. КС1 можно растворять вместе с мелассой или подавать непосредственно в дрожжерастильный аппарат в виде 10...20 %-ного раствора при складке и в период отборов.
2.2.4 Подготовка кукурузного экстракта
Экстракт
обильно обсеменен
Рекомендован также способ пастеризации экстракта с фуразолидоном. Водную суспензию препарата вносят в кукурузный экстракт из расчета 0,01% к объему последнего (0,1 кг/м ), тщательно перемешивают, нагревают до 85°С, выдерживают 3...10 мин (в зависимости от микрообсемененности) и охлаждают.
Воздействие
антимикробного препарата
наряду с пастеризацией обеспечивает
надежное антисептирование экстракта.
2.3 Аэрация среды
Аэрация преследует такие цели: непрерывное снабжение клеток кислородом, растворенным в жидкости, удаление образующегося диоксида углерода, быструю доставку к клеткам питательных веществ и поддержание дрожжевых клеток во взвешенном состоянии.
Потребность дрожжей в кислороде, по литературным данным, 0,8... 1,025 кг О2 на 1 кг СВ дрожжей. Обычно для оперативного расчета аэрации принимается 1 кг О2 на 1 кг СВ.
На скорость биосинтеза решающее влияние оказывает концентрация кислорода в среде. Если она ниже 0,6 мг/л, темп потребления кислорода резко снижается даже на фоне обеспеченности культуры всеми компонентами питания. Величина 0,6 мг/л, по данным Р. Финна, является критической концентрацией кислорода для дрожжей S. сегеvisiае.
Критериями эффективности аэрации являются скорость растворения кислорода М [кг/(м3-ч)] и объемный коэффициент массопередачи Кla или Кv (ч-1).
Скорость
растворения кислорода
В барботажных системах с механическим перемешиванием происходит задержка роста пузырьков воздуха, что зависит от интенсивности их перемешивания. Вихревые поперечные потоки снижают линейную (приведенную) скорость воздуха (отнесенная к поперечному сечению аппарата).
Кla зависит от конструкции, режима работы аппарата, вводимой мощности и от свойств и состава среды. Существенное влияние на Кla оказывают вязкость, поверхностное натяжение, температура, плотность, концентрация биомассы, содержание поверхностно-активных веществ и т.д.
Величина Кla находится в прямой зависимости от вводимой мощности, высоты столба жидкости и приведенной (линейной) скорости воздуха.
Подача воздуха в аппарат должна быть сбалансирована с подачей сахара и ожидаемой скоростью размножения дрожжей. Нарушение режима аэрации изменяет ход дрожжерастильного процесса: при недостатке воздуха наступает перестройка дрожжевых клеток в сторону анаэробного обмена, при этом увеличивается образование спирта и других побочных продуктов. Выход биомассы резко падает.
Коэффициент
использования кислорода
Па
мощность воздуходувных машин и
конечное давление оказывает влияние
изменение температуры
Изменение
относительной влажности
Чтобы
избежать при повышении влажности
наружного воздуха нарушения
температурного режима в аппарате,
особенно при высоких температурах,
необходим запас мощности охлаждающих
систем дрожжерастильного аппарата.
2.4 Пенообразование и пеногашение
Культуральные среды дрожжевого производства многокомпонентны и содержат вещества с различной поверхностной активностью. В турбулентном режиме работы дрожжерастильного аппарата вокруг поверхности раздела фаз газ — жидкость образуются пленки поверхностно-активных веществ, вызывая пенообразование. Его интенсивность возрастает пропорционально наличию в среде поверхностно-активных веществ, концентрации культуральных сред, температуре и рН среды, а также ее микрообсемененности.
Важное значение имеет режим аэрации: резкие колебания количества подаваемого воздуха и периодическое прекращение его подачи создают скачкообразное увеличение толщины пены, которая трудно поддается гашению. Рост столба жидкости, а следовательно, и давления слоя снижает скорость движения пузырьков воздуха и активность пенообразования.
В дрожжевом производстве в качестве пеногасителя используют олеиновую кислоту, которая одновременно является и ростовым фактором. Однако в связи с ее дороговизной повсеместно ведутся поиски дешевого и более эффективного средства. А пока экономия дорогостоящего пеногасителя достигается тщательным соблюдением технологических режимов, чистотой культуры, подготовкой эмульсий олеиновой кислоты с водой и автоматизацией ее подачи. Эмульсию готовят в соотношении с водой 1:20 в специальных установках под воздействием звуковых и ультразвуковых колебаний.
При
работе по непрерывным схемам можно
значительно снизить расход пеногасителя,
осуществляя отток среды
2.5 Технологическая схема выращивания дрожжей
Технологическая
схема производства дрожжей: 1 — осветлительный
чан; 2 — приточный чан; 3 и 4 — стеклянные
колбы; 5 — медная колба; 6 — малый аппарат
чистых культур; 7 — большой аппарат чистых
культур; 8 — 1-й промежуточный аппарат;
9 — 2-й промежуточный аппарат; 10 — дрожжерастильный
маточный аппарат; 11 — дрожжерастильный
задаточный аппарат; 12 — дрожжерастильный
товарный аппарат; 13 — отборочный чан;
14 — центробежный насос; 15 — воздуходувка;
16, 17, 18 — приёмники сепарированных дрожжей;
19 — сепараторы; 20 — поршневой насос; 21
— фильтры пресс; 22 — месильная машина;
23 — формовочная машина; 24 — холодильник.
2.6 Производство маточных дрожжей
Маточные дрожжи должны обладать высокой генеративной активностью и представлять собой чистую культуру сахаромицетов без примеси посторонних дрожжевых грибов и бактерий. Подъемная сила маточных дрожжей 35...40 мин, зимазная активность 30...40 мин, мальтазная активность 70 мин, осмочувствительность не более 20 мин, почкующихся клеток не более 10%. Различают маточные дрожжи чистой культуры и естественно чистой культуры. Первые выводят из лабораторного посева платиновой петлей, вторые — из дрожжей ЧК.
Для выращивания маточных дрожжей служат цех чистой культуры и обособленное оборудование на производстве, называемое маточным порядком. Они должны быть оснащены дрожжерастильными аппаратами сепараторами, сборниками для дрожжевого молока и фильтрпрессом. Для хранения прессованных дрожжей ЧК оборудуют специальное охлаждаемое помещение.
2.6.1 Стерилизация посуды и сред
Маточные дрожжи получают в условиях надежной стерильности процесса. Лабораторную посуду, пипетки и пр. стерилизуют сухим жаром или автоклавируют, соблюдая санитарные правила.
Питательные среды лабораторных стадий стерилизуют в автоклаве при давлении 50 кПа (0,5 кгс/см2) в течение 45...60 мин либо текучим паром в аппарате Коха при 100 °С по 30...45 мин 3 сут подряд.
Аппаратуру
цеха чистой культуры и маточного
порядка промывают и
Питательную среду в цехе чистой культуры дезинфицируют в специальном стерилизаторе либо непосредственно в инокуляторах при давлении 50 кПа в течение 45...60 мин.
В аппаратах маточного порядка среды перед использованием стерилизуют кипячением в течение 1,5...2 ч и охлаждают до 30 °С.
2.6.2 Выведение чистой культуры
Режим ВНИИХПа. Действующая многие годы классическая схема ВНИИХПа предусматривает восемь стадий на стерильных средах, из них четыре — в лаборатории, три — в цехе чистой культуры и одна — на производстве.
2.6.3 Укороченная схема выращивания маточных дрожжей
В Ленинградской лаборатории технологии дрожжей ВНИИПБТ разработана и внедрена на многих дрожжевых заводах новая технология получения маточных дрожжей ЧК и ЕЧК.