Автор работы: Пользователь скрыл имя, 16 Февраля 2012 в 22:31, научная работа
Дрожжи имеют огромное значение в винодельческом производстве. Еще в 19 веке Пастером, а затем и рядом других выдающихся исследователей, было показано, что дрожжи являются важнейшими факторами, определяющими как качество готового вина, так и эффективность процесса его производства в целом.
В связи с этим, для получения вин во многих странах стали использовать чистые культуры дрожжей, позволявшие улучшить процесс брожения, а также подчеркнуть те или иные особенности вина, а то и придать вину совершенно новые ароматические и вкусовые свойства.
Введение……………………………………………………………….…....................…3
Литературный обзор……………………………………………………….…….5
Технология препаратов АСВД…………………………………….…...……5
Исходные культуры дрожжей…………………………….……….….6
Сырье для культивирования винных дрожжей…….............................7
Основное сырье…………………………………..........................7
Дополнительные питательные вещества……………..……....10
Ингибиторы роста дрожжей……………………………...…....13
Культивирование винных дрожжей, предназначенных для высушивания…………………………………………………………..15
Характеристика процессов культивирования в дрожжевом производстве…………………………………………………....15
Характеристика процесса культивирования дрожжей, предназначенных для сушки…………………………….…….18
Сушка дрожжей…………………………………………......................22
Описание действующих технологий получения АСВД……….…...23
Научные основы использования препаратов АСД……………..…...27
Процессы восстановления………………………………….….27
Методы реактивации АСД………………………….…………31
Особенности подготовки шампанских АСД…………....…....33
Экспериментальная часть……………………………………………..……...…38
Материалы и методы……………………………………………………...…38
Вывод………………………………………………………………………….41
Список используемой литературы………………………………………...
Источники азота.
В качестве источника азота при производстве винных дрожжей лучше всего использовать водный раствор аммиака (ГОСТ 9-77), либо аммонийные соли: очищенный сульфат аммония (ГОСТ 10873-73) и диаммонийфосфат марки А (ГОСТ 8515-75). Могут использоваться также различные автолизаты дрожжей, представляющие смеси различных аминокислот, однако использование этих веществ ограничено их высокой стоимостью. Не рекомендуется использовать для этих целей карбамид, который как предполагают в настоящее время, способен вызывать образование вредных веществ.
Аммиак водный технический (ГОСТ 9-77) – получают растворением синтетического аммиака в воде. Содержание аммиака – не менее 25%. Для производства винных дрожжей можно использовать только марку А
Сульфат аммония (ГОСТ 10873-73) - кристаллический порошок белого или желтоватого цвета. Содержит 21% азота. Для производства винных дрожжей следует использовать только очищенный сульфат аммония. Другие сорта сульфата аммония, выпускаемые промышленностью по ГОСТ-9097-82 для этой цели непригодны, поскольку в них не нормируются вредные примеси (мышьяк, роданистые соединения, тяжелые металлы и другие вещества, токсичные для дрожжей даже в микродозах).
Диаммонийфосфат технический для пищевой промышленности (ГОСТ 8515-75) – представляет собой кристаллы белого цвета, допускается сероватый или желтоватый оттенки. Выпускается двух марок – А и Б. для производства винных дрожжей следует использовать только диаммонийфосфат марки А, в котором нормируется содержание мышьяка и фтора. Содержание азота – не менее 19,36%.
Карбамид (мочевина) – этот источник азота имеет ряд значительных преимуществ перед солями аммония, поскольку его получают синтетическим путем из аммиака и диоксида углерода по ГОСТ 2081-75 и вредные примеси в нем отсутствуют. Кроме того, содержание азота в нем очень высокое – 46,3% (в 2,2 раза больше, чем у диаммонийфосфата). В настоящее время карбамид широко используется в качестве источника азота для подкормки дрожжей в спиртовом производстве. Доказано присутствие в клетках дрожжей S. cerevisiae двух транспортных систем переноса мочевины, которая расщепляется уже в клетке на CO 2 и NH 3. Тем не менее, применение его может удлинять лаг-фазу дрожжей в связи с адаптированием культуры к этому компоненту питания. Кроме того, недавно было обнаружено, что наличие в среде культивирования карбамида может приводить к появлению этилкарбамата, который, как предполагают, обладает канцерогенным действием [36]. Поэтому, несмотря на все преимущества карбамида, для выращивания винных дрожжей его лучше не использовать.
Источники фосфора.
Основным источником фосфора
в дрожжевом производстве
Источники других элементов.
Помимо источников азота и
фосфора в среду
Источники витаминов.
Внесение некоторых витаминов
в среду культивирования
Таблица 2
Содержание важнейших витаминов в свекловичной и тростниковой мелассах и дрожжах
Витамины | Свекловичная меласса | Тростниковая меласса | Дрожжи |
Биотин мкг/г | 0,04-0,13 | 1,2-3,2 | 0,9 |
Пантотеновая кислота | 50-100 | 54-64 | 165 |
Инозитол | 6000-8000 | 6000 | 3700 |
Основное сырье дрожжевого производства – меласса, питательные соли – сернистый аммоний, диаммонийфосфат, сернокислый магний, а также серная кислота иногда содержат вещества, тормозящие рост и размножение дрожжевых клеток. Такими веществами являются: сернистый ангидрид, красящие вещества, летучие кислоты, нитриты, сульфиды и сульфиты, фтор, мышьяк, серебро, некоторые неорганические кислоты, остатки гербицидов и пестицидов. Действие этих веществ проявляется в зависимости от концентрации их в среде.
Сернистый ангидрид – он используется для сульфитации соков и сиропов сахарного производства и затем переходит в мелассу. Он угнетает жизнедеятельность дрожжей в уже концентрации 0,0025% (25 мг/л). Нормальной считают мелассу, содержащую не более 0,05% SO 2 , поскольку при разбавлении водой в 18 раз, как это обычно принято, концентрация SO 2 в среде составит не более 0,0029%, лишь незначительно превышая тормозящий уровень. При повышенном содержании SO 2 проводят хлорирование мелассы – 110 г активного хлора на каждые 100 г сернистого ангидрида [11,34].
Красящие вещества – это продукты реакций меланоидинообразования, щелочного разложения и карамелизации сахаров, которые образуются под воздействием высоких температур в плотных средах сахарного производства. В водных растворах эти меланоидины и карамели несут положительный заряд и легко адсорбируются отрицательно заряженными клетками дрожжей, придавая темную окраску биомассе дрожжей. Ингибирующее действие на рост дрожжей карамели оказывают при концентрации их в среде 0,1%[19].
Летучие кислоты – в мелассе содержится комплекс летучих кислот, вредных для дрожжей: муравьиная, уксусная, масляная и пропионовая. В свободном состоянии эти кислоты ингибируют рост дрожжей в концентрациях: муравьиная – 0,0085%, уксусная - 0,02%, масляная – 0,005%. Тем не менее, большая часть этих кислот находится в связанном виде – в форме солей, обладающих значительно меньшей токсичностью. Угнетение дрожжей наблюдается только при концентрации солей этих кислот 0,1-0,2%. Во время осветления и стерилизации мелассы часть этих кислот удаляется. Поэтому, считается допустимым содержание летучих кислот в мелассе до 1,2%. При большем же их содержании проводится горячее осветление с активным продуванием воздуха[11,22,23,37].
Нитриты - эти вещества образуются в результате восстановления спороносными нитритообразующими бактериями солей азотной кислоты – нитратов, которые в мелассе обычно присутствуют в количестве 0,013 - 0,17%. Процесс образования нитритов идет особенно интенсивно в условиях, благоприятных для развития нитритообразующих бактерий. Известно, что нитриты обладают мощнейшим фунгицидным действием. Так, при содержании их в среде 0,0005% почкование тормозится, 0,004% - размножение подавляется на 50%, 0,02% - почкование прекращается полностью [34].
Сульфиды и сульфиты – эти вещества могут попадать в среду культивирования вместе с сернокислыми солями, в основном сульфатом аммония. Сульфиды тормозят рост дрожжей при концентрации их 0,05%, а сульфиты – более 0,005% [19].
Фтор – этот элемент обладает высокой активностью, относится к токсичным элементам, содержится в фосфорных питательных солях и неизбежно вносится с ними в культуральные среды. Постоянное присутствие фтора в среде привело к адаптации к нему дрожжей. Дрожжи способны усваивать фтор, доводя его содержание в клетке до 10-13 мг/кг без заметного влияния на темп роста. Согласно нормам зарубежных производителей АСВД, все соли, применяемые при выращивании винных дрожжей должны содержать фтора не более 400 мг/кг [37].
Мышьяк – содержится в питательных солях и попадает с ними в среду культивирования. Очень ядовит для дрожжей – их клетки погибают уже при концентрировании мышьяка в среде 0,0005%. Согласно нормам зарубежных производителей АСВД, все соли, применяемые при выращивании винных дрожжей должны содержать мышьяка не более 20 мг/кг [37].
Серебро обладает выраженным ингибирующим действием на дрожжи. Наличие в среде всего лишь 0,000001% серебра в среде культивирования вызывает гибель клеток дрожжей.
Никель проявляет высокую токсичность и в концентрации 3 мг/л тормозит транспорт сахаров в дрожжевую клетку.
Культивирование дрожжей, предназначенных для получения АСВД, основывается на лучших разработках культивирования хлебопекарных дрожжей и представляет собой длительный многостадийный процесс, включающий в себя 3 основных этапа – лабораторной стадии, стадии получения производственной чистой культуры и стадии получения товарной продукции.
Особую важность при организации производства АСВД имеет выбор оптимального технологического режима выращивания дрожжей, обеспечивающего максимальную реализацию потенциальных возможностей всех производственных мощностей предприятия. В настоящее время в России и за рубежом разработано много технологических схем культивирования дрожжей, которые отличаются друг от друга способом выращивания дрожжей, количеством генераций, продолжительностью культивирования каждой генерации, скоростью роста дрожжей и т.д. по способу выращивания дрожжей все он и разделяются на непрерывные и периодические [21].
Непрерывные схемы предусматривают способ непрерывно-проточного культивирования. Подобная схема позволяет использовать имеющиеся производственные мощности наиболее полно. Известно немало примеров применения таких схем дл я производства дрожжей, однако, как отмечают зарубежные исследователи, все подобные системы страдают серьезным недостатком – быстрым инфицированием посторонней микрофлоры. Кроме того, пока на таких системах не удается достигать такой скорости роста и продуктивности как, например, на системах с притоком питательных веществ [34].
В 80-е годы в отечественный регламент дрожжевого производства раздельно для заводов с отечественным и польским оборудованием была внесена схема ВНИИХП с оттоками, содержащая элементы непрерывного процесса [12,20]. Элементы непрерывного процесса содержала и одна из лучших отечественных разработок – Тбилисская схема дрожжевого производства. Кроме того, был предложен ряд способов, которые могли быть использованы для снижения уровня инфицированности посторонней микрофлорой системы непрерывного культивирования дрожжей. Это, в частности, стерилизация поверхностного слоя культуральной среды паром с температурой 130-160 градусов Цельсия в течение 10-15 минут [2,3,4], использование процессов флотации и периодический отбор из среды пены, содержащей большое количество посторонних микроорганизмов [3].
Тем не менее, непрерывный способ получения дрожжей пока не утвердился ни в России, ни за рубежом.
Большинство действующих технологических схем относится ко второй группе, условно названной периодической. При этом есть истинно периодические схемы получения дрожжей, функционирующие в Англии, Швеции, ранее в ГДР. В бывшем СССР по такой схеме работал Узловский дрожжевой завод [18].
Главным преимуществом истинно периодических схем является возможность обеспечения стерильности процесса культивирования, поскольку все питательные вещества подаются в складку и стерилизуются. Однако при этом обеспечивается меньшая продуктивность, чем при использовании разновидности периодических схем – приточной, именуемой еще как «периодическая культура с добавлением источников питания», или Fed-batch. Изменение объема культуры из-за добавления источников питания отличает этот способ культивирования от непрерывно-проточного (хемостатного), при котором в течение всего процесса поддерживается постоянный объем и достигается максимальная продуктивность. Однако выход биомассы при Fed-batch процессе достаточно высок и боле чем в два раза превышает выход при простой периодической культуре.